KHẢO SÁT QUY TRÌNH CHIẾT XUẤT CAO TỪ LÁ TRẦU KHÔNG (Piper betle L., Piperaceae) Ở AN GIANG VÀ ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG KHÁNG KHUẨN CỦA CAO CHIẾT ĐƯỢC
Nội dung chính của bài viết
Tóm tắt
Đặt vấn đề: Lá Trầu không có chứa rất nhiều thành phần hóa học có hoạt tính sinh học, trong đó phải kể đến nhóm hợp chất polyphenol đã được chứng minh có tác động kháng khuẩn, kháng nấm da. Mục tiêu nghiên cứu: Khảo sát điều kiện chiết xuất tối ưu và đánh giá khả năng kháng khuẩn của cao lá Trầu Không ở An Giang. Đối tượng và phương pháp nghiên cứu: Lá Trầu Không tươi được chiết bằng phương pháp đun hồi lưu với dung môi là nước, một số điều kiện ảnh hưởng đến quá trình chiết xuất được xác định nhờ vào sự hỗ trợ của phần mềm BC-Pharsoft. Khảo sát in vitro gồm định tính hoạt tính kháng khuẩn và định lượng hoạt tính kháng khuẩn của cao lá Trầu không. Kết quả: Dữ liệu phân tích cho thấy hiệu suất chiết bị ảnh hưởng bởi 3 yếu tố khảo sát là tỷ lệ dược liệu/ dung môi, thời gian chiết và lượng dịch cô còn lại trước khi lắc với diclorometan. Cao lá Trầu Không cho tác dụng mạnh và tốt đối với vi khuẩn gram dương (Staphyllococci) hơn so với vi khuẩn gram âm (Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp). Cao lá Trầu Không thể hiện hoạt tính kháng khuẩn trên chủng vi khuẩn Staphyllococci với MIC khoảng từ 32-128 µg/mL, trên chủng vi khuẩn gram âm với MIC khoảng từ 128-256 µg/mL. Kết luận: Đã xây dựng được quy trình chiết xuất cao lá Trầu không (TK) và đánh giá được hoạt tính kháng khuẩn của cao chiết được.
Từ khóa
Cao lá Trầu Không, BCPharsoft, hoạt tính kháng khuẩn
Chi tiết bài viết
Bài báo này được cấp phép theo Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
Tài liệu tham khảo
2. Phan Thị Thanh Thủy và cộng sự (2014), Khảo sát điều kiện chiết xuất cao trầu không (Piper betel L, Piperaceae), Y học Thành phố Hồ Chí Minh, tập 18, phụ bản số 2.
3. Aiza Izyani Aminuddin, Siti Suraiya and Ruzilawati Abu Bakar (2018), Comparison of antimicrobial activity of crude extracts of Piper betle, Aloe vera, Solanum lycopersicum, Cinnamomum zeylanicum and Cucumis sativus against acne inducing bacteria, Asian Journal of Medicine and Biomedicine, Vol 2(1).
4. Buddhie Samanmalie Nanayakkara, Charmalie Lilanthi Abayasekara, Gehan J. Panagoda, H. M. Dinusha Kumari Kanatiwela and M. R. Dammantha M. Senanayake (2014), Anti-candidal activity of Piper betle (L.), Vitex negundo (L.) and Jasminum grandiflorum (L.), African Journal of Microbiology Research, Vol. 8(23), pp. 2307-2314.
5. Clinical and laboratory standard institute (2018), M100 Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing, USA, pp.30-64.
6. Coyle MB (2005), Manual of Antimicrobial Susceptibility Testing, American Society for Microbiology, pp.25-62, 133-141.
7. International Standard ISO (2005), Determination of substances characteristic of green and black tea Part 1, ISO 14502-1, Switzerland, pp.1-6.
8. Kazi Nahid Akter, Palash Karmakar, Abhijit Das, Shamima Nasrin Anonna, Sharmin Akter Shoma, and Mohammad Mafruhi Sattar (2014), Evaluation of antibacterial and anthelmintic activities with total phenolic contents of Piper betel leaves, Avicenna Journal of Phytomedicine, vol 4(5), pp.320-329.